簡要描述:《Quick Cell探針法支原體檢測試劑盒》采用支原體特異性引物和支原體特異性熒光探針(報告基因為FAM),用于對樣品的支原體基因組DNA進行熒光定量PCR擴增檢測。可用于檢測一切可能含支原體的樣品,比如:體外細胞培養(yǎng)的上清、血清、各種體液(如唾液、尿液、鼻腔分泌物)、別的液體樣品。
產(chǎn)品分類
Product Category詳細介紹
品牌 | 其他品牌 | 貨號 | AC16L068 |
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供貨周期 | 現(xiàn)貨 | 應用領域 | 生物產(chǎn)業(yè) |
Quick Cell探針法支原體檢測試劑盒(Quick Cell qPCR Mycoplasma Detection Kit with Probe)采用支原體特異性引物和支原體特異性熒光探針(報告基因為FAM),用于對樣品的支原體基因組DNA進行熒光定量PCR擴增檢測。試劑盒內(nèi)同時含有內(nèi)參對照質(zhì)粒mycoIC2和相應的引物和熒光探針(報告基因為VIC),用于監(jiān)控支原體DNA提取和qPCR擴增的效率。本試劑盒可用于檢測一切可能含支原體的樣品,比如:體外細胞培養(yǎng)的上清、血清、各種體液(如唾液、尿液、鼻腔分泌物)、別的液體樣品。
經(jīng)多次測試,本試劑盒有記錄可以識別在體外細胞培養(yǎng)中曾經(jīng)報道出現(xiàn)的20種支原體。根據(jù)文獻報道,這些支原體基本上占污染細胞的支原體種類的100%。具體如下:(1)M. hyorhinis、(2)M. fermentans、(3)M. arginini、(4)M. hominis、(5)M. orale、(6)M. salivarium、(7)M.pirum、(8)A. laidlawii、(9)M. agalactiae、(10)M. bovis、(11) M. bovoculi、(12)A. axanthum、(13)M. buccale、 (14) M. pneumoniae、(15)M. arthritidis、(16)M. pulmonis、(17)M. gallisepticum、(18)M. gallinarum、(19)M. canis、(20)Ureaplasma urealyticum(M.為Mycoplasma的縮寫;A.為Acholeplasma的縮寫)。
訂購信息
產(chǎn)品名稱 | 產(chǎn)品貨號 | 規(guī)格 |
Quick Cell探針法支原體檢測試劑盒 | AC16L068 | 50T |
產(chǎn)品組分
產(chǎn)品組分 | 規(guī)格 |
探針法溶液1P(50T) | 550 μL,含支原體和內(nèi)參檢測用引物及熒光探針 |
探針法溶液2T(50T)
| 50 μL,酶溶液 |
內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2 | 500 μL |
去離子水 | 1.2 mL |
陽性支原體DNA | 50 μL |
注:①本試劑盒由于含有內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2(用于監(jiān)控支原體DNA提取和qPCR擴增的有效性),客戶可以選擇進行樣品支原體DNA的提?。▋?nèi)參質(zhì)粒mycoIC2在支原體DNA提取過程中加入),也可以選擇不進行樣品支原體DNA的提取(內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2在配制體系時加入)。
②本試劑盒的配套儀器可以是任何具有FAM和VIC檢測通道的熒光定量PCR儀。
運輸與保存
藍冰運輸。-20℃避光保存,有效期60個月。
使用方法
1. 待測樣品的前處理
為了準確判斷細胞是否有支原體的污染,待測的細胞培養(yǎng)液樣品需要取自換液后培養(yǎng)2-3d且匯合度在90%左右的細胞培養(yǎng)液上清(貼壁細胞)。懸浮培養(yǎng)的細胞也需要在換液傳代后,讓細胞生長2-3d再取培養(yǎng)液進行檢測??梢园凑找韵聝煞N方法之一進行樣品的前處理:
1.1 方法一:對樣品進行支原體DNA的提取
很多樣品(比如:培養(yǎng)很多天的細胞上清、血清、血漿等)由于含有抑制PCR擴增的成分,如果樣品不進行前處理而直接檢測,有可能導致qPCR擴增失敗(qPCR結果:支原體通道和內(nèi)參對照通道均無擴增曲線)。該類樣品建議客戶進行樣品DNA提取(或者離心清洗,見后文方法二)后,再進行檢測。提取DNA的過程有兩個作用:(1) 基本可以去除所有抑制PCR擴增的成分,保證后續(xù)定量PCR擴增的正常進行;(2)具有濃縮支原體DNA的作用,可以提高相對檢測靈敏度10-100倍。
1.2 方法二:樣品不經(jīng)DNA提取
推薦此方法。該方法不僅可以濃縮支原體從而提高相對檢測靈敏度,還可以去除絕大部分可能的抑制物,PCR擴增被抑制的可能性極低。如果該簡單一步離心清洗的方法仍然無法去除抑制物,可以使用后文注意事項部分的三步離心清洗的方法。具體方法如下:
(1) 根據(jù)濃縮倍數(shù),可以取100 - 1500 μL上述待測樣品到1.5 mL離心管內(nèi),在普通臺式離心機上1000 rpm (大約150 g)低速離心5 min,將離心后的上清轉移到另一個離心管內(nèi),丟棄細胞沉淀。
(2) 將上清繼續(xù)13000 rpm(約16000 g)高速離心10 min,小心吸走全部上清(為避免碰到底部沉淀,可以保留底部3-5 μL液體),用50μL 5 mM Tris-HCl, pH 8.0-8.8(樣品可以長期保存)或者去離子水(樣品比較不穩(wěn)定,只適合當天或短期內(nèi)檢測使用)重懸沉淀(沉淀中含有支原體),吹吸均勻(如果最初使用了1500 μL的樣品,則支原體濃度大約提高了30倍)。
(3) 至此,該樣品可以直接進行檢測,也可以進行熱處理后再檢測(熱處理后,樣品保存更穩(wěn)定)。熱處理具體如下:95 ℃加熱處理5 min(可以轉移到PCR管內(nèi),在PCR儀上進行加熱處理),簡單離心(1000 g,5 sec)后,取上清進行檢測。
注1:這里的細胞培養(yǎng)上清不是指細胞經(jīng)胰*消化后的離心上清,而是指至少培養(yǎng)2d后的貼壁細胞培養(yǎng)液上清(不需要胰*消化,也不能取經(jīng)胰*消化后的離心上清進行檢測)或懸浮細胞培養(yǎng)液。
注2:本步驟的低速離心是為了去除哺乳動物細胞,以排除其不必要的干擾。所以離心力要嚴格控制在150-200 g,該離心力下,哺乳動物細胞將被沉淀下來而支原體不會。如果錯誤使用更高的離心力將可能導致支原體也被離心下來,從而導致假陰性。
注3:收集的待測細胞培養(yǎng)液樣品如果不立即檢測,請放于-20℃或-80℃冰箱保存,不得放于室溫或4℃冰箱。樣品在-20℃至少可以保存一個月,在-80℃可以長期保存。此外,為了節(jié)約檢測成本,可以將不同時間收集的樣品放于-20℃或-80℃冰箱保存,而后一起檢測。
2. 熒光定量PCR體系的配制
本步驟所有操作強烈建議使用進口濾芯吸頭(比如Axygen濾芯吸頭)進行操作,以避免試劑被污染。操作之前,請認真看完后文的注意事項后,再進行操作:
將探針法溶液1P、陽性支原體DNA、去離子水、內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2從-20 ℃冰箱中取出,放室溫融化(也可以用手握住幫助融化)。探針法溶液1P和探針法溶液2T開蓋之前,請高速離心一下(5000 rpm,離心1min)。探針法溶液2T不能在室溫長久放置(可以短時間放置5-10min),建議在-20 ℃冰箱直接吸取。
如果樣品總數(shù)為N(N=待測樣品數(shù)+1個陽性對照+1個陰性對照),待測樣品的前處理方法不同,對應的反應體系也不同,具體如下:
2.1樣品進行DNA提取后的反應體系
在DNA提取過程中,必須按說明書加入內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2。如果提取時沒有加入內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2,則按照后文“樣品不經(jīng)DNA提取的反應體系"進行操作:
(1) 反應體系:
表1. 樣品經(jīng)DNA提取后的反應體系
單個樣品體積(μL) | 樣品總數(shù) | 總體積(μL) | |
探針法溶液1P | 11 | N | 11×N×1.06 |
探針法溶液2T | 1 | N | 1×N×1.06 |
注:總體積中多配制6%(該比例如果覺得不合適,可以自己調(diào)整),是為了防止移液誤差,以保證每個反應管中的反應液足量。
例:如果待測樣品為8個(加上1個陰性和1個陽性對照),則樣品總數(shù)為10個。探針法溶液1P的總體積為11×10×1.06=116.6 μL,探針法溶液2T的總體積為1×10×1.06=10.6 μL。
(2) 將上述2種溶液混合,吹打均勻后,按每管12 μL分裝到熒光定量PCR八聯(lián)管中。
(3) 待測樣品管加入18 μL提取好的待測樣品DNA(樣品DNA加入量不能減少,否則內(nèi)參質(zhì)粒擴增可能失敗);陰性對照管加入2 μL內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2(吹吸均勻后加入)和16 μL去離子水(為防止去離子水被污染,此處建議使用20 μL移液槍配合200 μL吸頭進行吸取操作);陽性對照管加入2 μL陽性支原體DNA(吹吸均勻后加入)和16 μL去離子水。每管反應液的總體積為30 μL。
2.2 樣品不經(jīng)DNA提取的反應體系:
(1) 反應體系:
表3. 內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2統(tǒng)一在配制PCR反應體系時加入
單個樣品體積(μL) | 樣品總數(shù) | 總體積(μL) | |
去離子水 | 14 | N | 14×N×1.06 |
探針法溶液1P | 11 | N | 11×N×1.06 |
探針法溶液2T | 1 | N | 1×N×1.06 |
內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2 | 2 | N | 2×N×1.06 |
注:總體積中多配制6%(該比例如果覺得不合適,可以自己調(diào)整),是為了防止移液誤差,以保證每個反應管中的反應液足量。
例:如果待測樣品為8個(加上1個陰性和1個陽性對照),則樣品總數(shù)為10個。去離子水的總體積為14×10×1.06=148.4 μL,探針法溶液1P的總體積為11×10×1.06=116.6 μL,探針法溶液2T的總體積為1×10×1.06=10.6 μL,內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2的總體積為2×10×1.06=21.2 μL。
(2) 將上述3種溶液混合,吹打均勻后,按每管28 μL分裝到熒光定量PCR八聯(lián)管中。
(3) 待測樣品管加入2 μL待測樣品DNA,陰性對照管加入2 μL去離子水,陽性對照管加入2 μL陽性支原體DNA(吹吸均勻后加入)。每管反應液的總體積為30 μL。
(4) 蓋上熒光定量PCR八聯(lián)管蓋子,去除反應管中的大氣泡,3000-6000 rpm離心30 sec。
注:定量PCR八聯(lián)管的封蓋,應該佩戴全新的PE手套進行操作,避免裸手接觸定量PCR八聯(lián)管。
3. 實時熒光定量PCR擴增:
將PCR八聯(lián)管放入熒光定量PCR儀內(nèi),設置如下實時熒光定量PCR擴增程序:
表3. 熒光定量PCR擴增程序
步驟 | 作用 | 循環(huán)數(shù) | 溫度 | 時間 | 收集熒光信號 |
1 | 預變性 | 1 cycle | 95 ℃ | 2 min | 否(No) |
2 | 預擴增 (不收集熒光) | 5 cycles | 95 ℃ | 10 sec | 否(No) |
60 ℃ | 35 sec | 否(No) | |||
3 | 正式擴增 (需要收集熒光) | 40 cycles | 95 ℃ | 10 sec | 否(No) |
60 ℃ | 35 sec | 是(Yes) |
注:支原體檢測熒光通道選擇FAM(Reporter: FAM,Quencher: None);內(nèi)參對照檢測熒光通道選擇VIC(Reporter: VIC, Quencher: None);反應體積(Sample Volume)為30 μL;參考熒光(Passive Reference,只有ABI儀器需要設置)選擇None。
4. 結果分析:
4.1 ABI StepOne Plus 熒光定量PCR儀基線和閾值設定方法
其他熒光定量PCR儀的設置大同小異,請參考各自儀器說明書進行設置。
(1) 基線(Baseline)的設定:可以將Auto baseline前面的√ 去掉,然后手動設置基線的起點為2(將剛開始熒光值不穩(wěn)定的幾個循環(huán)排除在基線之外。如果起點2不合適,可以適當增減),終點為10左右。
(2) 閾值(Threshold)線的設定:不同通道的閾值應該分別設定。設定某個通道閾值線時,首先選中含陰性對照的若干個樣品,去掉儀器勾選的自動Threshold線,將其選項“√ Auto"改為“ Auto",然后手動調(diào)整閾值線,以閾值線剛好超過正常陰性對照FAM通道擴增曲線(無規(guī)則噪音線)的最高點為準。
4.2 實驗有效性判斷:
陽性對照管:其FAM通道有典型的S型擴增曲線(即指數(shù)擴增),其VIC通道的擴增線呈直線或者S型曲線。
陰性對照管:其FAM通道的擴增線呈直線,其VIC通道應該有典型的S型擴增曲線。
如果陽性對照管、陰性對照管同時滿足上述條件,則說明本次實驗結果有效,否則實驗結果無效。
典型的陰性直線型擴增線和陽性S型擴增曲線如圖1所示:
圖1. 典型的陰性直線型擴增線(左)和陽性S型擴增曲線(右)
4.3 待測樣品結果判斷:
待測樣品有可能出現(xiàn)以下4種組合:
表4. 待測樣品管FAM通道和VIC通道可能組合
組合 | FAM通道(測支原體) | VIC通道(測內(nèi)參) | 支原體污染判斷 |
1 | S型曲線 | S型曲線 | 支原體污染 |
2 | S型曲線 | 直線 | 支原體污染 |
3 | 直線 | S型曲線 | 無支原體 |
4 | 直線 | 直線 | PCR被抑制,結果無效 |
待測樣品管只要FAM通道有S型擴增曲線(組合1和組合2)就說明有支原體污染。因為外加的內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2分子數(shù)極少,如果支原體含量很大時,內(nèi)參質(zhì)粒的擴增會被抑制,導致內(nèi)參VIC通道無信號(組合2)。
如果待測樣品管FAM通道呈直線,而VIC通道有S型曲線(說明樣品的DNA提取過程和PCR擴增過程均正常)(由于提取過程中,外加的內(nèi)參質(zhì)粒mycoIC2分子數(shù)較少,作為內(nèi)參對照的VIC通道的Ct值會比較大),說明樣品無支原體。
如果陽性對照管和陰性對照管結果正常,而待測樣品管FAM通道和VIC通道均呈直線,說明PCR被抑制。如果樣品是經(jīng)過提取的,最可能原因是:DNA洗脫前,吸附膜中的乙醇沒有揮發(fā)(解決方法:洗脫前,將吸附柱放50-65℃烘箱至少15min)。如果樣品是沒有經(jīng)過提取的,則樣品本身含有抑制PCR的成分(解決方法:將樣品進行DNA提取或者離心清洗)。
注1:陽性結果需要結合擴增曲線(主要)和Ct值(次要)進行判斷,不能只看Ct值(因熒光值的波動,個別陰性樣品雖然擴增曲線基本呈直線,但可能會出現(xiàn)Ct值,此類樣品不能判斷為陽性。反之亦然:有些樣品有S型曲線,但是因為熒光值波動,導致沒有Ct值,此類樣品不能判斷為陰性)
注2:無論FAM通道,還是VIC通道,只要其擴增曲線有明顯抬升(呈現(xiàn)S型曲線趨勢),即使其Ct值在35-40范圍內(nèi),該檢測結果仍可判斷為陽性,可以報告該Ct值。
注3:結果判斷完后,將PCR八聯(lián)管用自封袋密閉后,進行適當處理。
注意事項
1. 本產(chǎn)品主要用于細胞上清支原體污染檢測,僅限于科學實驗研究使用,不得用于臨床診斷、治療等領域。
2. 防DNA污染注意事項:
(1) 強烈建議所有操作(特別是qPCR體系配制步驟和吸取試劑盒中試劑的時候)使用濾芯吸頭進行操作,以免試劑被污染。
(2) 必須確保使用的移液槍本身沒有殘留的支原體。
(3) 樣品前處理的各類吸頭、離心管,以及吸取陽性對照DNA、待測樣品DNA的吸頭,務必小心處理,請將其裝入含有半瓶水的帶蓋的、可密封的瓶子內(nèi),全部樣品吸取完后,蓋上瓶蓋,以防止陽性DNA的揮發(fā),造成環(huán)境的污染,進而造成假陽性。整個操作過程,最好不要說話,因為人的口腔和唾液都是帶支原體的。
(4) 反應后,請勿打開反應管的蓋子,否則有可能造成檢測環(huán)境的污染。結果判斷完后,將其用自封袋密閉后,進行適當處理。
3. 實驗室必須嚴格分房間操作(本試劑盒建議在有窗戶、通風良好的普通房間內(nèi)操作,請勿在密閉的房間操作。請勿在細胞培養(yǎng)間進行該步驟的操作,因為細胞培養(yǎng)間支原體污染概率很高):
試劑配制房間1:專門進行定量PCR體系的配制(建議該房間全部使用進口濾芯吸頭。)
DNA提取房間2:專門進行支原體DNA的提取;
DNA加樣房間3:專門進行定量PCR體系配制后,添加待測樣品、陽性對照、陰性對照等操作;
PCR擴增房間4:進行實時熒光PCR擴增檢測。
注:如果房間緊張,可以考慮將房間2、房間3合并在一個房間,而房間1和房間4必須獨立。各房間物品(包括移液槍)均為專用,不得交叉使用。
4. 如果出現(xiàn)qPCR的擴增被細胞的代謝產(chǎn)物抑制時(qPCR結果:支原體通道和內(nèi)參對照通道均無擴增曲線),可以采取以下幾種措施:
(1) 將取樣的時間提前到換液后2 d或3 d,此時細胞上清的PCR擴增抑制物相對比較少,一般不會產(chǎn)生嚴重的抑制。據(jù)我們測試,換液后5 d,PCR擴增抑制物就已經(jīng)大量積累。
(2) 用PBS對待測樣品進行離心清洗,去除樣品中的抑制物。具體方法如下:取1 mL細胞上清,先13000 rpm離心10 min,吸走950 μL上清;加PBS 950 μL,再次離心,吸走950 μL上清;再加PBS 950 μL,第三次離心,小心吸走全部上清(為避免碰到底部沉淀,可以保留底部3-5 μL液體),用50 μL 5 mM Tris-HCl, pH 8.0-8.8 重懸沉淀,95 ℃加熱處理5 min,簡單離心(1000 g,5 sec)后,取上清進行檢測。但是該方法有如下缺點:第一,如果樣品支原體含量較少,離心清洗可能導致漏檢,因為離心清洗過程中,可能導致支原體部分丟失。第二,個別樣品,即使經(jīng)過上述清洗也無法去除抑制劑。
(3) 抽提細胞上清的支原體DNA后再進行PCR鑒定。
(4) 使用李記生物的Quick Cell支原體快速檢測試劑盒(細胞培養(yǎng)專用)(貨號:AC16L061)或者Quick Cell 發(fā)光法支原體檢測試劑盒(貨號:AC16L062)進行檢測,經(jīng)測試,未發(fā)現(xiàn)這兩種試劑盒會被細胞的代謝產(chǎn)物所抑制。為了預防PCR的擴增被細胞的代謝產(chǎn)物抑制的問題,也可以考慮將所有待測樣品全部進行離心清洗或者DNA提取后,再使用本試劑盒進行檢測。
5. 支原體檢測樣品可以分成兩類:第一類,用含血清的培養(yǎng)液培養(yǎng)的哺乳動物細胞上清液,由于該條件非常適合支原體生長,培養(yǎng)數(shù)天后,支原體密度一般較高,可達107-9/mL,可以直接檢測。第二類,低溫保存的血漿、血清、臍帶血、胰*、抗生素、未使用的培養(yǎng)液等樣品,由于這些樣品即使有支原體污染,支原體含量一般很少,直接使用快速支原體檢測試劑盒進行檢測,往往檢測不出來。這些樣品建議:(1)對樣品的支原體進行離心濃縮將支原體DNA濃縮提取,該兩種方法大約可以將檢測靈敏度繼續(xù)提高10-100倍。該方法速度快,當天出結果,但是可靠性不如后面的培養(yǎng)法。(2)使用支原體液體培養(yǎng)基(必須同時接種不含精*酸和含精*酸的兩種支原體液體培養(yǎng)基)培養(yǎng)3-7 d后,再進行檢測。具體方法請參考李記生物Quick Cell 發(fā)光法支原體檢測試劑盒(貨號:AC16L062)說明書中最后的注意事項部分。該方法速度較慢,需要3-7 d,但是可靠性高。
6. 如何提高本試劑盒檢測靈敏度:如果預期待測樣品支原體含量較少(比如,低溫保存的血清、臍帶血、胰*、抗生素、未使用的培養(yǎng)液、生物制品、極個別細胞培養(yǎng)上清等),可以采取以下幾種措施:(1)將支原體DNA濃縮提取后再進行檢測(提取過程還可以把所有可能的PCR抑制劑全部去除),大約可以將檢測靈敏度提高10-100倍。(2)對支原體進行離心濃縮:取1 mL細胞上清,先13000 rpm(約16000 g)離心10 min,吸走全部上清,用50 μL 5 mM Tris-HCl, pH 8.0-8.8 重懸沉淀,95 ℃加熱處理5 min,簡單離心后(1000 g,5 sec),取上清進行檢測。該離心濃縮過程大約可以將檢測靈敏度提高20倍。(3)如果樣品是未經(jīng)提取的,可以通過增加反應管中樣品DNA的加入量,比如由原來的2 μL增加到18 μL,如此可以提高檢測靈敏度9倍(沒有提取純化或者離心清洗的待測樣品,一般不能直接擴大待測樣品體積,否則PCR被抑制的可能性將大幅度增加。)
7. 如發(fā)現(xiàn)細胞被支原體污染,推薦使用李記生物的Quick Cell支原體祛除預防試劑盒(貨號:AC16L066)、EZ 水浴鍋抑菌劑(貨號:AC16L162)、EZ 細胞房除菌劑(貨號:AC16L143)。產(chǎn)品詳情可咨銷或見官。
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